{"id":13,"date":"2019-08-07T13:54:27","date_gmt":"2019-08-07T13:54:27","guid":{"rendered":"http:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/?page_id=13"},"modified":"2019-09-28T21:34:13","modified_gmt":"2019-09-28T21:34:13","slug":"acidos-nucleicos","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/acidos-nucleicos\/","title":{"rendered":"\u00c1cidos nucleicos"},"content":{"rendered":"\n<h2>Breve historia<\/h2>\n\n\n\n<p style=\"text-align:left\">El ADN fue aislado por primera vez en 1869 por el m\u00e9dico Suizo Friedrich Miescher, quien realizaba experimentos acerca de la composici\u00f3n qu\u00edmica de la pus. Al examinar las vendas con pus, not\u00f3 un precipitado de una sustancia desconocida la cual llam\u00f3 nucle\u00edna, debido a que lo hab\u00eda extra\u00eddo a partir de los n\u00facleos.<sub>4<\/sub> Sin embargo, su estructura y car\u00e1cter qu\u00edmico a\u00fan eran completamente desconocidos.<\/p>\n\n\n\n<p style=\"text-align:left\">En 1919 Phoebus Levene identific\u00f3 que un nucle\u00f3tido est\u00e1 formado por una base nitrogenada, un az\u00facar y un grupo  fosfato. Tambi\u00e9n identific\u00f3 la existencia del ADN y del ARN. En 1928, Frederick Griffith trabajaba con cepas lisas y rugosas de una bacteria, las cuales ten\u00edan un &#8220;factor transformante&#8221;; fragment\u00f3 la nucle\u00edna, y de ella separ\u00f3 un componente proteico y un grupo prost\u00e9tico, este \u00faltimo, por ser un \u00e1cido, &nbsp;le llam\u00f3 \u00e1cido nucleico.<sub>4<\/sub><\/p>\n\n\n\n<p style=\"text-align:left\">A\u00f1os m\u00e1s tarde, en 1930 Levene y su maestro Albrecht Kossel determinaron que la nucle\u00edna de que hab\u00eda identificado Miescher era el &nbsp;\u00e1cido desoxirribonucleico ADN formado por cuatro bases nitrogenadas adenina, guanina, citosina y timina, el az\u00facar desoxirribosa y un grupo fosfato.<sub>4<\/sub> En 1937 William Astbury produjo el primer patr\u00f3n de difracci\u00f3n de rayos x que mostraba que el ADN ten\u00eda una estructura regular.<sub>4<\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>&nbsp;En 1944, &nbsp;Oswald Avery, Colin MacLeod y Maclyn McCarty extrajeron la fracci\u00f3n activa del &#8220;factor transformante&#8221; y, mediante varios an\u00e1lisis, observaron que estaba constituido principalmente por &#8220;una forma viscosa de \u00e1cido desoxirribonucleico que no conten\u00eda prote\u00ednas, l\u00edpidos, ni polisac\u00e1ridos.<sub>4<\/sub>&nbsp; <\/p>\n\n\n\n<p>En 1952 Alfred Hershey y Martha Chase comprobaron que un fago transmit\u00eda su informaci\u00f3n gen\u00e9tica en su ADN, pero no su prote\u00ednas. El bioqu\u00edmico austriaco Erwin Chargaff analiz\u00f3 diferentes especies de ADN determin\u00f3 que la adenina, tiamina, citosina y guanina no se encontraban en cantidades iguales, variaban entre especies, pero no de entre individuos de la misma especies.<sub>1<\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>En 1953 Rosalind Franklin, &nbsp;qu\u00edmica que estudiaba la estructura de las mol\u00e9culas con la t\u00e9cnica de cristalograf\u00eda de rayos X, se enfoc\u00f3 en utilizar esa t\u00e9cnica para estudiar el ADN.<sub>6<\/sub> &nbsp;Maurice Wilkins, Francis Crick y James Watson lograron &nbsp;mediante estos estudios de difracci\u00f3n de rayos X, descubrir la estructura molecular de doble h\u00e9lice del ADN, por lo que les otorgaron el premio Novel de fisiolog\u00eda y medicina en 1962.<sub>4<\/sub> Rosalind Franklin falleci\u00f3 antes de su reconocimiento <sub>1<\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>Desde 1960 se estuvo intentando con renacuajos y otros animales la clonaci\u00f3n artificial, hasta en &nbsp;&nbsp;1997 Wilmut: permiti\u00f3 demostrar que las manifestaciones fenot\u00edpicas&nbsp; vienen del ADN con&nbsp; la oveja Dolly, que no fue clonaci\u00f3n, sino fue creada a partir de una c\u00e9lula som\u00e1tica.<sub>1<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h2>&nbsp;Introducci\u00f3n<\/h2>\n\n\n\n<h3>ADN y ARN<\/h3>\n\n\n\n<p>Los dos tipos principales de \u00e1cidos nucleicos son&nbsp;el \u00e1cido desoxirribonucleico (ADN)&nbsp;y el&nbsp;\u00e1cido ribonucleico (ARN).<sub>4<\/sub>&nbsp;El ADN es el material gen\u00e9tico que se encuentra en todos los organismos vivos, en el n\u00facleo de las c\u00e9lulas eucariotas y en los org\u00e1nulos, cloroplastos y mitocondrias, tambi\u00e9n forma un complejo con las prote\u00ednas histonas para formar la cromatina, que forma el cromosoma y estos puede contener  miles de genes (ver figura 1).&nbsp;Estos genes contienen la informaci\u00f3n para hacer prote\u00ednas&nbsp;para la mayor\u00eda de las funciones de nuestro cuerpo.<sub>4 <\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>Las mol\u00e9culas de ADN nunca abandonan el n\u00facleo, sino que utilizan un intermediario para comunicarse con el resto de la c\u00e9lula. El ARN, participa principalmente en la s\u00edntesis de prote\u00ednas.&nbsp;&nbsp;Este intermediario es el&nbsp;ARN mensajero (ARNm).&nbsp;Otros tipos de ARN, como rRNA, tRNA y micro RNA, est\u00e1n involucrados en la s\u00edntesis de prote\u00ednas y su regulaci\u00f3n.<sub>4<\/sub> El ADN y el ARN est\u00e1n formados por mon\u00f3meros conocidos como&nbsp;nucle\u00f3tidos (ver figura 1).&nbsp;<\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"500\" height=\"218\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/08\/FIGURA-1-ADN-1.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-167\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/08\/FIGURA-1-ADN-1.png 500w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/08\/FIGURA-1-ADN-1-300x131.png 300w\" sizes=\"(max-width: 500px) 100vw, 500px\" \/><figcaption>Figura 1. Cromosoma<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p>En general, una base ligada a un az\u00facar se denomina&nbsp;nucleosido y una base ligada a un az\u00facar y a uno o m\u00e1s grupos fosfatos recibe el nombre de&nbsp;nucleotido <sub>14<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h2>Componentes<\/h2>\n\n\n\n<h3>Acido fosf\u00f3rico<\/h3>\n\n\n\n<p>Su f\u00f3rmula qu\u00edmica es  H<sub>3<\/sub>PO<sub>4<\/sub>. Cada nucle\u00f3tido &nbsp;puede contener; un&nbsp;monofosfato AMP. dos difosfato ADP, o tres trifosfato ATP. aunque como mon\u00f3mero constituyentes de los \u00e1cidos nucleicos solo aparecen en forma de nucle\u00f3sidos monofosfatos. <sub>14 <\/sub>(ver figura 2).<\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-image\"><figure class=\"aligncenter is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/acido-fosforico-3-1.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-239\" width=\"695\" height=\"404\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/acido-fosforico-3-1.png 918w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/acido-fosforico-3-1-300x175.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/acido-fosforico-3-1-768x447.png 768w\" sizes=\"(max-width: 695px) 100vw, 695px\" \/><figcaption>Figura 2. \u00c1cido Fosf\u00f3rico<\/figcaption><\/figure><\/div>\n\n\n\n<h3>Az\u00facar Desoxirribosa y Ribosa <\/h3>\n\n\n\n<p> La estructura de soporte de una hebra de&nbsp;ADN&nbsp;est\u00e1 formada por unidades de grupos&nbsp;fosfato&nbsp;y&nbsp;az\u00facar desoxirribosa. <sub>14<\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>El az\u00facar en el ADN es la desoxirribosa, (ver figura 3). y en el ARN  el az\u00facar es la ribosa. (ver figura 4).\u00a0La diferencia entre los az\u00facares es la presencia del grupo hidroxilo en el segundo carbono. <sub>4<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"1024\" height=\"528\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/desoxiribosa-3-1024x528.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-234\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/desoxiribosa-3-1024x528.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/desoxiribosa-3-300x155.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/desoxiribosa-3-768x396.png 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/desoxiribosa-3.png 1120w\" sizes=\"(max-width: 767px) 89vw, (max-width: 1000px) 54vw, (max-width: 1071px) 543px, 580px\" \/><figcaption>Figura 3, Desoxirribosa<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"1024\" height=\"549\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ribosa3-1024x549.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-236\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ribosa3-1024x549.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ribosa3-300x161.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ribosa3-768x411.png 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ribosa3.png 1204w\" sizes=\"(max-width: 767px) 89vw, (max-width: 1000px) 54vw, (max-width: 1071px) 543px, 580px\" \/><figcaption>Figura 4. Ribosa.<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p>Los \u00e1tomos de carbono de la mol\u00e9cula de az\u00facar est\u00e1n numerados como 1 &#8216;, 2&#8217;, 3 &#8216;, 4&#8217; y 5 &#8216;(lee como &#8220;un primo&#8221;).<sub>7<\/sub> Las mol\u00e9culas de az\u00facar se unen entre s\u00ed a trav\u00e9s de grupos fosfato, que forman enlaces fosfodi\u00e9ster.(ver  figura 5). Entre los \u00e1tomos de carbono tercero (3\u2032, \u00abtres prima\u00bb) y quinto (5\u2032, \u00abcinco prima\u00bb) de dos anillos adyacentes de az\u00facar.<sub>14 <\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/08\/FIGURA-2-Enlace-fosfodiester.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-171\" width=\"250\" height=\"424\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/08\/FIGURA-2-Enlace-fosfodiester.png 250w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/08\/FIGURA-2-Enlace-fosfodiester-177x300.png 177w\" sizes=\"(max-width: 250px) 100vw, 250px\" \/><figcaption>Figura 5. Enlace fosfodi\u00e9ster <\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p>En toda la cadena del \u00e1cido nucleico, los enlaces fosfodiester presentan la misma orientaci\u00f3n, por lo que existe una polaridad de la hebra. En una&nbsp;doble h\u00e9lice, la direcci\u00f3n de los&nbsp;nucle\u00f3tidos en una hebra (3\u2032 \u2192 5\u2032) es opuesta a la direcci\u00f3n en la otra hebra (5\u2032 \u2192 3\u2032). Esta organizaci\u00f3n de las hebras de ADN se denomina&nbsp;anti paralela; son cadenas paralelas, pero con direcciones opuestas. La estructura de los \u00e1cidos nucleicos se representa con el extremo 5\u2032 a la izquierda y el 3\u2032 a la derecha.<sub>8<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>Bases Nitrogenadas<\/h3>\n\n\n\n<p>Las bases nitrogenadas, son mol\u00e9culas org\u00e1nicas que contienen carbono y nitr\u00f3geno y son bases porque contienen un grupo amino que puede unir un hidr\u00f3geno adicional y disminuye la concentraci\u00f3n de iones de hidr\u00f3geno a su alrededor, haci\u00e9ndolo m\u00e1s b\u00e1sico.&nbsp;<sub>4<\/sub> Las bases tienen compuestos heteroc\u00edclicos y arom\u00e1ticos con dos o m\u00e1s \u00e1tomos de nitr\u00f3geno, se clasifican en dos grupos;<\/p>\n\n\n\n<h4>Bases p\u00faricas<\/h4>\n\n\n\n<p>&nbsp;Bases p\u00faricas o&nbsp;purinas adenina (ver figura 11) y guanina (ver figura 12), derivadas de la&nbsp;purina y formadas por dos anillos unidos entre s\u00ed, carbono-nitr\u00f3geno, su anillo formado no es totalmente plano.<sub>9<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h4>Adenina<\/h4>\n\n\n\n<p> En el c\u00f3digo gen\u00e9tico se representa con la letra&nbsp;A. Es un derivado de la purina con un grupo amino en la posici\u00f3n 6. Forma el nucle\u00f3sido&nbsp;adenosina(desoxiadenosina en el ADN) y el nucle\u00f3tido&nbsp; adenilatoo (desoxi)adenosina monofosfato (dAMP, AMP). En el ADN siempre se&nbsp;empareja con la timina de la cadena complementaria mediante 2 puentes de hidr\u00f3geno,&nbsp;A=T. Su f\u00f3rmula qu\u00edmica es C5H5N5&nbsp;y su nomenclatura 6-aminopurina. La adenina, junto con la timina, fue descubierta en 1885 por el m\u00e9dico alem\u00e1n&nbsp;Albrecht Kossell Tambi\u00e9n forma parte de la mol\u00e9cula de trifosfato de adenosina, que constituye la fuente principal de energ\u00eda a nivel celular, y est\u00e1 presente en muchas sustancias naturales como la remolacha, el t\u00e9 y la orina.<sub>17<\/sub>, (ver figura 11). <sub>18<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/adenina-doble-1024x499.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-269\" width=\"667\" height=\"324\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/adenina-doble-1024x499.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/adenina-doble-300x146.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/adenina-doble.png 1302w\" sizes=\"(max-width: 667px) 100vw, 667px\" \/><figcaption>Figura 11. Adenina<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h4>Guanina<\/h4>\n\n\n\n<p> En el c\u00f3digo gen\u00e9tico se representa con la letra&nbsp;G. Es un derivado p\u00farico con un grupo oxo en la posici\u00f3n 6 y un grupo amino en la posici\u00f3n 2. Forma el nucle\u00f3sido (desoxi)guanosina&nbsp;y el nucle\u00f3tido guanalato&nbsp;o (desoxi)guanosina monofosfato (dGMP, GMP). La guanina siempre se&nbsp;empareja&nbsp;en el ADN con la citosina de la cadena complementaria mediante tres enlaces de hidr\u00f3geno,&nbsp;G\u2261C. Su f\u00f3rmula qu\u00edmica es C5H5N5O y su nomenclatura 6-oxo, 2-aminopurina. (ver figura 12).<sub>18<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/guanina-doble-1024x534.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-272\" width=\"624\" height=\"325\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/guanina-doble-1024x534.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/guanina-doble-300x156.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/guanina-doble-768x400.png 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/guanina-doble.png 1189w\" sizes=\"(max-width: 624px) 100vw, 624px\" \/><figcaption>Figura 12. Guanina<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h4>Bases pirimid\u00ednicas<\/h4>\n\n\n\n<p>Bases pirimid\u00ednicas o bases pirimidinas&nbsp;citosina(ver figura 13). y timina(ver figura 14), derivadas de la pirimidina y con un solo anillo.   El anillo de las pirimidinas son anillos arom\u00e1ticos heteroc\u00edclicos con seis miembros y con dos \u00e1tomos de nitr\u00f3geno, es un sistema plano, Los \u00e1tomos son numerados siguiendo el sentido de las agujas del reloj.<sub>9<\/sub> <\/p>\n\n\n\n<h4>Citosina<\/h4>\n\n\n\n<p> En el c\u00f3digo gen\u00e9tico se representa con la letra&nbsp;C. Es un derivado pirimid\u00ednico, con un&nbsp;grupo amino en posici\u00f3n 4 y un grupo oxo en posici\u00f3n 2. Forma el&nbsp;nucleosido citidina(desoxicitidina en el ADN) y el&nbsp;nucleotido citililato&nbsp;o (desoxi)citidina monofosfato (dCMP en el ADN, CMP en el ARN). La citosina siempre se&nbsp;empareja&nbsp;en el ADN con la guanina de la cadena complementaria mediante un triple enlace,&nbsp;C\u2261G. Su f\u00f3rmula qu\u00edmica es C4H5N3O y su nomenclatura 2-oxo, 4 aminopirimidina.<sub> 18 <\/sub>Su&nbsp;masa moleculares de 111,10&nbsp;unidades de masa at\u00f3mica. La citosina se descubri\u00f3 en 1894, al aislarla del tejido del&nbsp;timo&nbsp;de carnero.<sub>16<\/sub> (ver figura 13).<sub>9<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-video\"><video controls src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/guaninalol.mp4\"><\/video><figcaption>Figura 13 Citosina<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p> En los \u00e1cidos nucleicos existe una quinta base pirimid\u00ednica, denominada&nbsp;uracilo&nbsp;(U), que normalmente ocupa el lugar de la timina en el&nbsp;ARN&nbsp;y difiere de esta en que carece de un grupo metilo en su anillo. El uracilo no se encuentra habitualmente en el ADN, solo aparece raramente como un producto residual de la degradaci\u00f3n de la citosina por procesos de desaminaci\u00f3n  oxidativa <sub>15<\/sub> Entre el anillo de imidazol y el anillo de las pirimidinas se ha reportado un ligero pliegue o  arruga.<sub>9<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h4>Timina<\/h4>\n\n\n\n<p>En el&nbsp;c\u00f3digo gen\u00e9tico representa con la letra&nbsp;T. Es un derivado pirimid\u00ednico con un&nbsp;grupo oxo&nbsp;en las posiciones 2 y 4, y un&nbsp;grupo metil&nbsp;en la posici\u00f3n 5. Forma el&nbsp;nucleosido timina y el&nbsp;nucleotido timidilato&nbsp;o timidina monofosfato (dTMP). <sub>18<\/sub> En el ADN, la timina siempre se&nbsp;empareja con la adenina de la cadena complementaria mediante 2&nbsp;puentes de hidr\u00f3geno,&nbsp;T=A. Su f\u00f3rmula qu\u00edmica es C5H6N2O2&nbsp;y su nomenclatura 2, 4-dioxo, 5-metilpirimidina.  <sub>9 ,15<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"1024\" height=\"476\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/timinadoble-1024x476.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-289\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/timinadoble-1024x476.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/timinadoble-300x139.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/timinadoble-768x357.png 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/timinadoble.png 1280w\" sizes=\"(max-width: 767px) 89vw, (max-width: 1000px) 54vw, (max-width: 1071px) 543px, 580px\" \/><figcaption>Figura 14 Timina<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p>Tambi\u00e9n existen otras bases nitrogenadas  llamadas&nbsp;bases nitrogenadas minoritarias, derivadas de forma natural o sint\u00e9tica de alguna otra base mayoritaria. Lo son por ejemplo la hipoxantina&nbsp;, relativamente abundante en el tARN&nbsp;, o la&nbsp;cafeina (ver figura 15).  Ambas derivadas de la adenina; otras, como el&nbsp;aciclovir, derivadas de la guanina, son an\u00e1logos sint\u00e9ticos usados en terapia antiviral; otras, como una de las derivadas del uracilo, son antitumorales.<sub>18<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/cafeina-doble-1024x709.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-292\" width=\"591\" height=\"409\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/cafeina-doble-1024x709.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/cafeina-doble-300x208.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/cafeina-doble-768x532.png 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/cafeina-doble.png 1046w\" sizes=\"(max-width: 591px) 100vw, 591px\" \/><figcaption>Figura 15. Cafe\u00edna<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h2>Propiedades\nde las bases Nitrogenadas<\/h2>\n\n\n\n<h3>Aromaticidad<\/h3>\n\n\n\n<p>En qu\u00edmica org\u00e1nica, un&nbsp;anillo arom\u00e1tico&nbsp;se define como una mol\u00e9cula cuyos electrones de los enlaces dobles tienen libre circulaci\u00f3n dentro de la estructura c\u00edclica. La movilidad de los electrones dentro del anillo le da estabilidad a la mol\u00e9cula.<sub>9<\/sub>.<\/p>\n\n\n\n<h3>Tautomeria\no isomer\u00eda<\/h3>\n\n\n\n<p>Debido a que un \u00e1tomo de hidr\u00f3geno unido a otro \u00e1tomo puede migrar a una posici\u00f3n vecina&nbsp; en las bases nitrogenadas se dan dos tipos de tautomer\u00eda. <sub>18<\/sub> <\/p>\n\n\n\n<p>Tautomer\u00eda lactama-lactima, donde el hidr\u00f3geno migra del nit\u00f3geno al oxigeno del grupo oxo forma lactama y visceversa forma lactima.<sub>18<\/sub>. Tautomeria imina-amina, donde el hidr\u00f3geno puede estar formando el grupo amina  o migrar al nit\u00f3geno adyacente forma imina.<sub>18<\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>La adenina s\u00f3lo puede presentar tautomer\u00eda amina-imina, la timina y el uracilo muestran tautomer\u00eda doble lactama-lactima, y la guanina y citosina pueden presentar ambas (ver figura 16). Por otro lado, y aunque se trate de mol\u00e9culas&nbsp;apolares, las bases nitrogenadas presentan suficiente car\u00e1cter&nbsp;polar&nbsp;como para establecer puentes de hidr\u00f3geno ya que tienen \u00e1tomos muy&nbsp;electronegativos (nitr\u00f3geno y ox\u00edgeno) que presentan carga parcial negativa, y \u00e1tomos de hidr\u00f3geno con carga parcial positiva, de manera que se forman dipolos que permiten que se formen estos enlaces d\u00e9biles&nbsp;.<sub>18<\/sub> <\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/tautomer\u00eda-1.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-483\" width=\"633\" height=\"515\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/tautomer\u00eda-1.png 993w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/tautomer\u00eda-1-300x244.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/tautomer\u00eda-1-768x626.png 768w\" sizes=\"(max-width: 633px) 100vw, 633px\" \/><figcaption>Figura 16. Formas tautom\u00e9ricas de las bases nitrogenadas<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p>La naturaleza arom\u00e1tica de este sistema de anillos les otorga la capacidad de experimentar un fen\u00f3meno llamado tautomer\u00eda ceto-enol.9 Es decir, las purinas y las pirimidinas existen en pares tautom\u00e9ricos. Los taut\u00f3meros ceto son predominantes a pH neutro para las bases uracilo, timina y guanina. En contraste, la forma enol es predominante para la citosina, en pH neutros. Este aspecto es fundamental para la formaci\u00f3n de&nbsp;puentes de hidr\u00f3geno entre las bases.<sub>9<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>Absorci\u00f3n\nde luz UV<\/h3>\n\n\n\n<p>Otra propiedad de las purinas y las pirimidinas es su capacidad de absorber fuertemente la luz ultravioleta (luz UV). Este patr\u00f3n de absorci\u00f3n es una consecuencia directa de la aromaticidad de sus anillos heteroc\u00edclicos.El espectro de absorci\u00f3n tiene un m\u00e1ximo cercano a los 260 nm. (ver figura 17).Propiedad que sirve para &nbsp;cuantificar la cantidad de ADN en muestras.<sub>9<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"1024\" height=\"678\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ESPECTRO-DE-ADENOSIN-1024x678.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-356\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ESPECTRO-DE-ADENOSIN-1024x678.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ESPECTRO-DE-ADENOSIN-300x199.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ESPECTRO-DE-ADENOSIN-768x508.png 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ESPECTRO-DE-ADENOSIN.png 1576w\" sizes=\"(max-width: 767px) 89vw, (max-width: 1000px) 54vw, (max-width: 1071px) 543px, 580px\" \/><figcaption>Figura 17. Espectro de absorci\u00f3n UV de la adenosina<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h3>Solubilidad\nen agua.<\/h3>\n\n\n\n<p>Gracias al fuerte car\u00e1cter arom\u00e1tico de las bases nitrogenadas, estas mol\u00e9culas son pr\u00e1cticamente insolubles en el agua.<sub>9<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h2>Apareamiento de bases<\/h2>\n\n\n\n<p> La d\u00f3ble h\u00e9lice de ADN se mantiene estable mediante la formaci\u00f3n de puentes de hidr\u00f3geno. Para la formaci\u00f3n de un enlace de hidr\u00f3geno&nbsp;&nbsp;una de las bases debe presentar un &#8220;donador&#8221; de hidr\u00f3genos con un \u00e1tomo de hidr\u00f3geno con carga parcial positiva (-NH2&nbsp;o -NH) y la otra base debe presentar un grupo &#8220;aceptor&#8221; de hidr\u00f3genos con un \u00e1tomo cargado&nbsp;electronegativamente( C=O o N).&nbsp;<sub>18<\/sub>.Los puentes de hidr\u00f3geno no son enlaces covalentes, pueden romperse y formarse de nuevo de forma relativamente sencilla. Por esta raz\u00f3n, las dos hebras de la doble h\u00e9lice pueden separar por fuerza mec\u00e1nica o por alta&nbsp;temperatura.<sub>19<\/sub>. Los dos tipos de pares de bases forman un n\u00famero diferente de enlaces de hidr\u00f3geno: A=T. forman dos puentes de hidr\u00f3geno, y C\u2261G figura   tres puentes de hidr\u00f3geno . El par de bases GC es por tanto m\u00e1s fuerte que el par de bases AT.(ver figura 18). Las dobles h\u00e9lices largas de ADN con alto contenido en GC tienen hebras que interaccionan m\u00e1s fuertemente que las dobles h\u00e9lices cortas con alto contenido en AT.<sub>19 <\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/Interaccion.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-484\" width=\"647\" height=\"528\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/Interaccion.png 857w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/Interaccion-300x245.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/Interaccion-768x627.png 768w\" sizes=\"(max-width: 647px) 100vw, 647px\" \/><figcaption>Figura 18. Interacciones por puentes de hidr\u00f3geno de las bases nitrogenadas<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h2>Estructura del ADN<\/h2>\n\n\n\n<h3>Estructura primaria<\/h3>\n\n\n\n<p>&nbsp;La diferencia de la informaci\u00f3n radica en la distinta secuencia de bases nitrogenadas. Esta secuencia presenta un c\u00f3digo, que determina seg\u00fan el orden de las bases.<sub>18<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>Estructura secundaria<\/h3>\n\n\n\n<p>En una cadena doble, destr\u00f3gira o lev\u00f3gira, son complementarias, son antiparaleas pues el extremo 3\u00b4 se enfrenta al extremo 5&#8242;. Existen tres modelos de ADN, el de tipo B es el m\u00e1s abundante y es el que describe la estructura descrita por Watson y Crick .<sub>18<\/sub> <\/p>\n\n\n\n<h3>Estructura terciaria<\/h3>\n\n\n\n<p>Es como se almacena el ADN en un espacio reducido, para formar los&nbsp;cromosomas. Var\u00eda seg\u00fan se trate de organismos procariotas o eucariotas. En c\u00e9lulas procariotas el ADN se pliega como una super-h\u00e9lice, en forma circular, asociada a una peque\u00f1a cantidad de prote\u00ednas, organelos celulares como mitocondrias y en los cloroplastos. <sub>18<\/sub>  En c\u00e9lulas eucariotas la cantidad de ADN en cada cromosoma es muy grande se requieren prote\u00ednas como las histonas y prote\u00ednas no histonicas como las protaminas.<sub>17<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>Estructura cuaternaria<\/h3>\n\n\n\n<p>El enrollamiento de los nucleosomas&nbsp;recibe el nombre de solenoide. Dichos solenoides se enrollan formando la cromatina del n\u00facleo interf\u00e1sico de la&nbsp;c\u00e9lula eucariota. Cuando la c\u00e9lula entra en divisi\u00f3n, el ADN se compacta m\u00e1s, formando as\u00ed los&nbsp;cromosoma.<sub>18<\/sub>   <\/p>\n\n\n\n<h3>Hendiduras\nmayor y menor<\/h3>\n\n\n\n<p>La&nbsp;doble h\u00e9lice&nbsp;es una espiral&nbsp;dextr\u00f3gira, esto es, cada una de las cadenas denucleotidos&nbsp;gira a derechas; yendo de abajo a arriba, si las dos hebras giran a derechas se dice que la doble h\u00e9lice es dextr\u00f3gira, y si giran a izquierdas,&nbsp;lev\u00f3gira&nbsp;la conformaci\u00f3n m\u00e1s com\u00fan que adopta el ADN, la doble h\u00e9lice es dextr\u00f3gira, girando cada par de bases respecto al anterior unos 36\u00ba. <\/p>\n\n\n\n<p>Cuando las dos hebras de ADN se enrollan una sobre la otra, se forman huecos o hendiduras entre una hebra y la otra, dejando expuestos los laterales de las bases nitrogenadas del interior. En la conformaci\u00f3n m\u00e1s com\u00fan que adopta el ADN aparecen, como consecuencia \u00e1ngulos formados entre los&nbsp;azucares de ambas cadenas de cada par de bases nitrogenadas formadose , dos hendiduras alrededor, la hendidura o surco mayor, que mide 22&nbsp; \u00c5 &nbsp;A(2,2&nbsp;nm) de ancho, y la otra, la hendidura o surco menor, que mide 12&nbsp;\u00c5 (1,2&nbsp;nm) de ancho.\u200b Cada vuelta de h\u00e9lice, cuando esta ha realizado un giro de 360\u00ba  de principio de hendidura mayor a final de hendidura menor, medir\u00e1 por tanto 34&nbsp;\u00c5. (ver figura 19).<\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/hendidura-mayor-y-hendidura-menor.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-363\" width=\"505\" height=\"278\" \/><figcaption>Figura 19 Hendidura mayor e Hendidura menor del ADN<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p>La anchura de la hendidura mayor implica que los extremos de las bases son m\u00e1s accesibles en esta, de forma que la cantidad de grupos qu\u00edmicos expuestos tambi\u00e9n es mayor lo cual facilita la diferenciaci\u00f3n entre los pares de bases A-T, T-A, C-G, G-C.&nbsp; tambi\u00e9n se ver\u00e1 facilitado el reconocimiento de secuencias de ADN por parte de diferentes&nbsp;prote\u00ednas&nbsp;sin la necesidad de abrir la doble h\u00e9lice. <\/p>\n\n\n\n<p>Las prote\u00ednas como los factores de transcripci\u00f3n&nbsp;&nbsp;que pueden unirse a secuencias espec\u00edficas, frecuentemente contactan con los laterales de las bases expuestos en la hendidura mayor, los grupos que quedan expuestos en la hendidura menor son similares, de forma que el reconocimiento de los pares de bases es m\u00e1s dif\u00edcil; por ello se dice que la hendidura mayor contiene m\u00e1s informaci\u00f3n que la hendidura menor.<sub>24 <\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>Estructuras en doble h\u00e9lice.<\/h3>\n\n\n\n<p>El ADN existe en muchas conformaciones ,en organismos vivos s\u00f3lo se han observado las conformaciones&nbsp;ADN-A,ADN-B y ADN-Z La conformaci\u00f3n que adopta el ADN depende de su secuencia, la cantidad y direcci\u00f3n de&nbsp;superenrollamiento&nbsp;que presenta, la presencia demodificaciones qu\u00edmicas&nbsp;en las bases y las condiciones de la soluci\u00f3n, tales como la concentraci\u00f3n de&nbsp;iones de&nbsp;metales&nbsp;y poliaminas&nbsp;.<sub>20 <\/sub>De las tres conformaciones, la forma &#8220;B&#8221; es la m\u00e1s com\u00fan en las condiciones existentes en las c\u00e9lulas. \u200b Las dos dobles h\u00e9lices alternativas del ADN difieren en su geometr\u00eda y dimensiones.<\/p>\n\n\n\n<h3> ADN-B<\/h3>\n\n\n\n<p>Las figuras siguientes son representaciones de la estructura B-ADN. <sub>13<\/sub>. la conformaci\u00f3n del anillo de az\u00facar: C3&#8242;-endo, el n\u00famero de nucle\u00f3tidos por vuelta son 10 , la conformaci\u00f3n del enlace glucos\u00eddico en su  \u00e1ngulo de torsi\u00f3n&nbsp;es de 36\u00ba13,  En esta estructura&nbsp;la profundidad del surco mayor es muy similar a la del surco menor,&nbsp;debido a que las bases que se aparean son pr\u00e1cticamente coplanares y a que el eje de la h\u00e9lice corta a este plano de una forma casi perpendicular, pasando adem\u00e1s por el centro del par de bases. <sub>13<\/sub>.  (ver figura 20).<\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-image\"><figure class=\"aligncenter is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/estructura-b-adn.gif\" alt=\"\" class=\"wp-image-367\" width=\"288\" height=\"428\" \/><figcaption>Figura 20, Esturctura B-ADN<\/figcaption><\/figure><\/div>\n\n\n\n<h3>ADN-A o RNA-11<\/h3>\n\n\n\n<p>La forma &#8220;A&#8221; ocurre en condiciones no fisiol\u00f3gicas en formas deshidratadas, cuando se reduce la humedad relativa por debajo de 75%, las vueltas son m\u00e1s cortas, hay m\u00e1s nucle\u00f3tidos por vuelta, las bases est\u00e1n m\u00e1s inclinadas , con una hendidura menor superficial y m\u00e1s amplia, y una hendidura mayor m\u00e1s estrecha y profunda. No hay ning\u00fan hueco posible para el agua, los fosfatos est\u00e1n m\u00e1s cerca unos de otros en vertical. mientras que en la c\u00e9lula puede producirse en apareamientos h\u00edbridos de hebras ADN-ARN, &nbsp;esta estructura no se ha encontrado in vivo pero la adoptan los h\u00edbridos ADN-ARN y el ARN bicatenario. <sub>12 <\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>En el A-ADN el eje de la h\u00e9lice no pasa por el centro del par de bases, sino que forma con el plano de estas un \u00e1ngulo de entre 13 y 19\u00ba, lo que hace que el&nbsp;surco mayor sea muy profundo&nbsp;y que se extienda desde la superficie hacia el interior sobrepasando el eje central y adentr\u00e1ndose en la otra mitad del cilindro helicoidal, por el contrario,&nbsp;el surco menor es muy poco profundo, s\u00f3lo una peque\u00f1a depresi\u00f3n en el cilindro helicoidal.<sub>13<\/sub>( ver figura 21).<\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-image\"><figure class=\"aligncenter is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/estructura-a-adn.gif\" alt=\"\" class=\"wp-image-368\" width=\"314\" height=\"414\" \/><figcaption>Figura 21. Estructura A-ADN<\/figcaption><\/figure><\/div>\n\n\n\n<h3>ADN- Z<\/h3>\n\n\n\n<p>Los segmentos de ADN en los que las bases han sido modificadas por&nbsp;metilacion pueden tener cambios conformacionales mayores y adoptar la forma &#8220;Z&#8221;. En este caso, las hebras giran alrededor del eje de la h\u00e9lice en una espiral que gira a mano izquierda, lo opuesto a la forma &#8220;B&#8221; m\u00e1s frecuente.Esta estructura se favorece por la alternancia de purinas y pirimidinas se ha comprobado que el ADN-Z existe in vivo por anticuerpos desarrollados contra el ADN-Z12, su estructura es m\u00e1s estrecha, m\u00e1s larga, hay m\u00e1s nucle\u00f3tidos por vuelta, surco mayor superficial y surco menor profundo. Estas estructuras poco frecuentes pueden ser reconocidas por prote\u00ednas espec\u00edficas que se unen a ADN-Z y posiblemente est\u00e9n implicadas en la regulaci\u00f3n de la&nbsp;transcripci\u00f3n <sub>21 <\/sub> El ADN.Z es una forma estructural observada in vitro en segmentos en donde se da la secuencia alternante dG-dC y en altas concentraciones salinas o cuando se a\u00f1ade alcohol.  (ver figura 21).<\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-image\"><figure class=\"aligncenter is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/estructura-zadn.gif\" alt=\"\" class=\"wp-image-370\" width=\"284\" height=\"586\" \/><figcaption>Figura 21. Estructura z-ADN<\/figcaption><\/figure><\/div>\n\n\n\n<h3>ADN cu\u00e1druplex<\/h3>\n\n\n\n<p>En los extremos de los cromosomas lineales existen regiones especializadas de ADN denominadas tel\u00f3meros&nbsp;. La funci\u00f3n principal de estas regiones es permitir a la c\u00e9lula replicar los extremos cromos\u00f3micos utilizando la enzima telomerasa&nbsp;, porque  las enzimas que replican el resto del ADN no pueden copiar los extremos 3&#8242; de los cromosomas. \u200b Estas terminaciones cromos\u00f3micas especializadas tambi\u00e9n protegen los extremos del ADN, y evitan que los sistemas de reparaci\u00f3n del ADN&nbsp;&nbsp;en la c\u00e9lula los procesen como ADN da\u00f1ado que debe ser corregido. \u200b ( ver figura 22). En las c\u00e9lulas humanas, los tel\u00f3meros son largas zonas de ADN de hebra sencilla que contienen algunos miles de repeticiones de una \u00fanica secuencia TTAGGG.<sub>11,22<\/sub><\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-image\"><figure class=\"aligncenter\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"500\" height=\"450\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/estructura-cuadruplex-del-adn-1.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-383\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/estructura-cuadruplex-del-adn-1.png 500w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/estructura-cuadruplex-del-adn-1-300x270.png 300w\" sizes=\"(max-width: 500px) 100vw, 500px\" \/><figcaption>Figura 22 Estructura cu\u00e1druplex del ADN<\/figcaption><\/figure><\/div>\n\n\n\n<p>Estas secuencias  con guanina pueden estabilizar los extremos cromos\u00f3micos con la formaci\u00f3n de estructuras de cuatro bases las cuatro bases de  guanina forman unidades con superficie plana que se apilan una sobre otra, y forman una estructura cu\u00e1druple-G&nbsp;<sub>22.<\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>Tambi\u00e9n se pueden formar otras estructuras, con el juego central de cuatro bases,  con una una hebra sencilla plegada alrededor de las bases, o   varias hebras paralelas diferentes, de forma que cada una contribuye con una base a la estructura central.<\/p>\n\n\n\n<p>Los&nbsp;tel\u00f3meros tambi\u00e9n forman largas estructuras en lazo, denominadas lazos telom\u00e9ricos o lazos-T (T-loops&nbsp;en ingl\u00e9s), las hebras simples de ADN se enroscan sobre s\u00ed mismas en un  c\u00edrculo estabilizado por prote\u00ednas que se unen a tel\u00f3meros. En el extremo del lazo T, el ADN telom\u00e9rico de hebra sencilla se sujeta a una regi\u00f3n de ADN de doble hebra porque la hebra de ADN telom\u00e9rico altera la doble h\u00e9lice y se aparea a una de las dos hebras. Esta estructura de triple hebra se denomina&nbsp;lazo de desplazamiento&nbsp;o&nbsp;lazo D&nbsp;&nbsp;(D-loop).<sub>23<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>i-motif<\/h3>\n\n\n\n<p>El i-motif son estructuras secundarias de ADN de cuatro cadenas que se forman en un punto particular en el ciclo de vida de las c\u00e9lulas, en la \u00faltima fase del G1, cuando el ADN es le\u00eddo  activamente,<sub>10,<\/sub>(ver figura 23), se cree que se forman en regiones del genoma ricas en citosina y tienen funciones reguladoras &nbsp;Son estabilizados por condiciones \u00e1cidas, se componen de dos cadenas duplex de ADN de cadena paralela mantenidos juntos en una orientaci\u00f3n anti-paralela por pares de bases citocina -citosina intercalados y dependen del ciclo celular, de factores como la secuencia y las condiciones  ambientales <sub>14<\/sub><\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-image\"><figure class=\"aligncenter\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"392\" height=\"277\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/i-Motif-1.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-387\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/i-Motif-1.png 392w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/i-Motif-1-300x212.png 300w\" sizes=\"(max-width: 392px) 100vw, 392px\" \/><figcaption>Figura 23. i.Motif<\/figcaption><\/figure><\/div>\n\n\n\n<p>Tambi\u00e9n los i-motifs aparecen en algunas regiones relacionadas con la regulaci\u00f3n gen\u00e9tica en las que el ADN controla si los genes son activados o no y se pongan en marcha determinados mecanismos moleculares. El fallo  de estos mecanismos puede tener consecuencias desfavorables  y en los tel\u00f3meros, los extremos de los cromosomas son importantes para el proceso de envejecimiento.&nbsp;<sub>10<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3><strong>El ADN no codificante<\/strong><\/h3>\n\n\n\n<p>El ADN no codificante corresponde a secuencias del genoma que no generan una prote\u00edna, pero regulan genes para determinar cu\u00e1ntos genes se tienen que activar; como se debe empacar el ADN en los cromosomas, <sub>35<\/sub> por ejemplo &nbsp;los&nbsp;tel\u00f3mero &nbsp;y&nbsp;centr\u00f3meros contienen pocos o ning\u00fan gen codificante de prote\u00ednas, pero son importantes para estabilizar la estructura de los cromosomas.<a><sub> 25<\/sub><\/a><\/p>\n\n\n\n<h3><strong>Enzimas que modifican\nel ADN<\/strong><\/h3>\n\n\n\n<h4><strong>Nucleasas <\/strong><\/h4>\n\n\n\n<p>Las&nbsp;nucleasas&nbsp;son&nbsp;enzimas &nbsp;que cortan las hebras de ADN mediante la hidr\u00f3lisis de enlaces fosfodi\u00e9ster. Las exonucleasas fragmentan las hebras de ADN en los extremos de la secuencia mientras que las&nbsp;endonucleasas&nbsp;cortan el ADN por secuencias espec\u00edficas en el interior de las hebras y se utilizan con mayor frecuencia&nbsp; y las&nbsp;que se utilizan son las enzimas de restricci\u00f3n.<sub> 29<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h4><strong>Ligasas.<\/strong><\/h4>\n\n\n\n<p>Las  ADN ligasas pueden reunir hebras de ADN separadas realizando la reparaci\u00f3n del ADN.<sub> 29<\/sub> <\/p>\n\n\n\n<h4><strong>Topoisomerasas <\/strong><\/h4>\n\n\n\n<p>Las&nbsp; topoisomeras son enzimas que tienen a la actividad de nucleasas y ligasas. Estas enzimas cortan la h\u00e9lice de ADN   reduciendo  el grado de superenrollamiento y  vuelven a unir el ADN. \u200b Otras enzimas  cortan una h\u00e9lice de ADN y luego pasan a una segunda hebra de ADN a trav\u00e9s de la rotura, antes de reunir las h\u00e9lices, est\u00e1n presentes en los procesos de replicaci\u00f3n del ADN y de la transcripci\u00f3n.<sub>29<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h4><strong>Helicasas.<\/strong><\/h4>\n\n\n\n<p>Las helicasas&nbsp; utilizan energ\u00eda almacenada en los nucle\u00f3sidos trifosfatos&nbsp;ATP, para romper puentes de hidr\u00f3geno entre bases y separar la doble h\u00e9lice de ADN en hebras simples. \u200b Estas enzimas son importantes para la mayor\u00eda de los procesos en los que las enzimas necesitan acceder a las bases del ADN.<\/p>\n\n\n\n<h4><strong>Polimerasas<\/strong><\/h4>\n\n\n\n<p>Las&nbsp;polimerasa son enzimas&nbsp;&nbsp;que sintetizan cadenas de nucle\u00f3tidos a partir de nucle\u00f3sidos trifosfatos. Su secuencia son copias de cadenas de polinucle\u00f3tidos que ya existen y se denominan&nbsp;moldes, su funci\u00f3n es  ir a\u00f1adiendo nucle\u00f3tidos al grupo hidroxilo en la posici\u00f3n 3&#8242;. Todas las polimerasas funcionan en direcci\u00f3n 5\u2032 &#8211;&gt; 3\u2032.<sub>30<\/sub> Existen varias polimerasas:<\/p>\n\n\n\n<p>Polimerasa\ndependiente de ADN<\/p>\n\n\n\n<p>&nbsp;Una&nbsp;polimerasa realiza una copia de ADN a partir de otra &nbsp;secuencia de ADN, pueden reconocer errores en la s\u00edntesis y generan un desacoplamiento, por lo activan a una&nbsp;exonucleasa. <sub>30<\/sub> \u200b <\/p>\n\n\n\n<p>Polimerasa\ndependiente de ARN.<\/p>\n\n\n\n<p>Las&nbsp;polimerasas dependientes de ARN&nbsp;hacen copias de la secuencia de una hebra de ARN en ADN, ejemplos; &nbsp;la telomerasa es una polimerasa que contiene su propio molde de ARN como parte de su estructura,<sub>31<\/sub> &nbsp;y la transcriptasa reversa &nbsp;se une a una secuencia del ADN denominada&nbsp;promotor, y separa las hebras del ADN, copia &nbsp;la secuencia del gen en un transcrito de&nbsp;ARN mensajero hasta alcanzar una regi\u00f3n de ADN denominada&nbsp;terminador donde se detiene y se separa del ADN. <\/p>\n\n\n\n<h3><strong>Da\u00f1o del ADN<\/strong><\/h3>\n\n\n\n<p>El ADN pude ser da\u00f1ado por mut\u00e1geno por ejemplo; la luz\nultravioleta da\u00f1a al ADN produciendo d\u00edmero de timina, radicales libre y el\nper\u00f3xido de hidr\u00f3geno producen modificaciones de bases en la guanina y roturas\nde dobles hebras, estas \u00faltimas, son las m\u00e1s dif\u00edciles de reparar y pueden\nproducir mutaciones puntuales, inserciones y deleciones de la secuencia de ADN\nas\u00ed como translocaciones cromos\u00f3micas <sub>26 <\/sub>Muchos mut\u00e1genos se encuentran entre dos pares de bases, del\nADN, las separa y cambia la doble h\u00e9lice , pueden inhiben la transcripci\u00f3n y\nreplicaci\u00f3n del ADN, estos mut\u00e1genos se utilizan para inhibir el crecimiento de\nlas c\u00e9lulas cancerosas, se les denomina agentes intercalantes, y pueden ser\nmol\u00e9culas arom\u00e1ticas,<sub>27<\/sub> como;<\/p>\n\n\n\n<p><strong>Bromuro de etidio<\/strong>, su f\u00f3rmula&nbsp;C21H20BrN3. Es un compuesto fluorescente, arom\u00e1tico, con una estructura tric\u00edclica con grupos amino-benceno en cada lado tiene una mol\u00e9cula pirid\u00ednica con seis \u00e1tomos de nitr\u00f3geno y un anillo arom\u00e1tico. (ver figura 24). &nbsp;<\/p>\n\n\n\n<div class=\"wp-block-image\"><figure class=\"aligncenter\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"1024\" height=\"484\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/bromuro-power-1024x484.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-402\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/bromuro-power-1024x484.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/bromuro-power-300x142.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/bromuro-power-768x363.png 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/bromuro-power.png 1670w\" sizes=\"(max-width: 767px) 89vw, (max-width: 1000px) 54vw, (max-width: 1071px) 543px, 580px\" \/><figcaption>Figura 24. Bromuro de etidio.<\/figcaption><\/figure><\/div>\n\n\n\n<p><strong>Clorhidrato de daunomicina<\/strong> es un f\u00e1rmaco que bloquea la multiplicaci\u00f3n celular y la reparaci\u00f3n del ADN por la inhibici\u00f3n de la topoisomerasa, su nombre comercial es el cerubidine. <\/p>\n\n\n\n<p>&nbsp;La <strong>doxorubicina<\/strong>, &nbsp;es un&nbsp;f\u00e1rmaco&nbsp;de la familia de las&nbsp;antraciclinas, y es una mol\u00e9cula intercalante del ADN, su nombre comercial Adriamicina o Rubex, el nuevo f\u00e1rmaco es Doxil que tiene liposomas encapsulados.<\/p>\n\n\n\n<p>&nbsp;<strong>Benzopireno <\/strong>pertenece a una clase de hidrocarburos arom\u00e1ticos tiene 2 o m\u00e1s anillos benc\u00e9nicos, ya sea en forma simple o m\u00faltiple, formando cadenas o racimos.<\/p>\n\n\n\n<p><strong>Acridinas<\/strong>, C13H9N, es un compuesto org\u00e1nico y un compuesto heteroc\u00edclico del nitr\u00f3geno. La acridina se obtiene a partir de los aceites de antraceno, y por el proceso de destilaci\u00f3n del alquitr\u00e1n, se utiliza en la fabricaci\u00f3n de colorantes. <\/p>\n\n\n\n<p><strong>Aflatoxinas <\/strong>son toxinas producidas por ciertos hongos en el ma\u00edz, el man\u00ed o cacahuates, la semilla de algod\u00f3n y los frutos secos. &nbsp;son producidas principalmente por&nbsp;<em>Aspergillus flavus&nbsp;y&nbsp;Aspergillus parasiticus<\/em>, las aflatoxinas son carcin\u00f3genos potentes que pueden afectar a cualquier \u00f3rgano o sistema, y especialmente al h\u00edgado y el ri\u00f1\u00f3n.<\/p>\n\n\n\n<p>&nbsp;<em>Talidomida <\/em>es un compuesto con C13H10N2O4 tiene dos enanti\u00f3meros la forma R produce un efecto sedante y la forma S produce un efecto teratog\u00e9nico. (ver figura 25), &nbsp;En los a\u00f1os 60 se utiliz\u00f3 como un f\u00e1rmaco sedante y para n\u00e1useas en mujeres embarazadas y posteriormente se descubri\u00f3 que produc\u00eda mutaciones causando malformaciones cong\u00e9nitas, En los \u00faltimos a\u00f1os se ha descubierto propiedades antiinflamatorias, e inmunoreguladoras.<\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"1024\" height=\"307\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/talidomida-power-1024x307.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-398\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/talidomida-power-1024x307.png 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/talidomida-power-300x90.png 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/talidomida-power-768x230.png 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/talidomida-power.png 1246w\" sizes=\"(max-width: 767px) 89vw, (max-width: 1000px) 54vw, (max-width: 1071px) 543px, 580px\" \/><figcaption>Figura  25    Talidomida<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p> El da\u00f1o en el ADN puede provocar la&nbsp;alteraci\u00f3n de procesos fisiol\u00f3gicos, como s\u00edntesis, transporte y degradaci\u00f3n de prote\u00ednas. si el da\u00f1o es grande y no puede ser reparado, lleva consigo la&nbsp;muerte celular.<sub>26<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-embed-youtube wp-block-embed is-type-video is-provider-youtube wp-embed-aspect-16-9 wp-has-aspect-ratio\"><div class=\"wp-block-embed__wrapper\">\n<iframe loading=\"lazy\" title=\"ADN generalidades\" width=\"525\" height=\"295\" src=\"https:\/\/www.youtube.com\/embed\/9SBCi2Zvmzc?feature=oembed\" frameborder=\"0\" allow=\"accelerometer; autoplay; clipboard-write; encrypted-media; gyroscope; picture-in-picture; web-share\" referrerpolicy=\"strict-origin-when-cross-origin\" allowfullscreen><\/iframe>\n<\/div><\/figure>\n\n\n\n<h2>Estructura del ARN<\/h2>\n\n\n\n<p>El \u00e1cido ribonucleico, o ARN, participa principalmente en el proceso de s\u00edntesis de prote\u00ednas bajo la direcci\u00f3n del ADN.&nbsp;El ARN generalmente es de cadena sencilla y est\u00e1 hecho de ribonucle\u00f3tidos que est\u00e1n unidos por enlaces fosfodi\u00e9ster, (ver figura 26).&nbsp;Un ribonucleico en la cadena de ARN contiene ribosa (el az\u00facar pentosa), una de las cuatro bases nitrogenadas (A, U, G y C) y el grupo fosfato.  Existen cuatro tipos principales de ARN: ARN mensajero, , ARN de transferencia, ARN ribos\u00f3mico y microARN (miARN).&nbsp;<\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"235\" height=\"279\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-421\" \/><figcaption>Figura 26. ARN<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h3>El ARN mensajero.<\/h3>\n\n\n\n<p>El ARN mensajero presenta una&nbsp;estructura lineal&nbsp;de una sola hebra. Su funci\u00f3n es&nbsp;trasladar la informaci\u00f3n gen\u00e9tica del ADN a los ribosomas, para la s\u00edntesis de prote\u00ednas. Cada mol\u00e9cula de ARNm es complementaria a un fragmento o gen de ADN, que sirve de molde para su s\u00edntesis durante la&nbsp;transcripci\u00f3n<sub>7<\/sub>. La poli A es una cola de adeninas de 80 a 250  residuos de adenina se le llama una Poliadenilaci\u00f3n, se adhiere al segmento 3\u2019 y ayuda a que el ARNm no se degrade en el citoplasma, por ribonucleasa, Por el otro lado en el segmento de 5\u2019 se a\u00f1ade durante la transcripci\u00f3n un gorro o CAP que es una guanina modificada  que es un residuo de 7\u2013metilguanosina  anclado al extremo por un enlace del tipo 5\u2032,5\u2019\u2013trifosfato, (ver figura 27). El CAP al igual que la Poli A aumenta la vida del ARNm en el citoplasma a dem\u00e1s de que los ribosomas reconocer\u00e1n a ese ARNm para mediar la traducci\u00f3n a prote\u00ednas. <\/p>\n\n\n\n<p>  Esta estructura se conoce como \u201ccola\u201d poliA y sirve como zona de uni\u00f3n para varias prote\u00ednas. Cuando un procariota adquiere una cola poliA tiende a estimular su degradaci\u00f3n  <\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-MENSAJERO.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-425\" width=\"490\" height=\"236\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-MENSAJERO.png 680w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-MENSAJERO-300x145.png 300w\" sizes=\"(max-width: 490px) 100vw, 490px\" \/><figcaption>Figura 27. ARN mensajero<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p> ARNm monocistr\u00f3nico: contiene la informaci\u00f3n necesaria para la s\u00edntesis de una prote\u00edna en eucariotas.<sub>7<\/sub> ARNm policistr\u00f3nico: contiene informaci\u00f3n para la s\u00edntesis de varias prote\u00ednas procariotas (ver figura 28).<sub>7<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-MONOCISTRONICO.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-427\" width=\"460\" height=\"324\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-MONOCISTRONICO.png 519w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-MONOCISTRONICO-300x211.png 300w\" sizes=\"(max-width: 460px) 100vw, 460px\" \/><figcaption>Figura 28. ARN Monocistr\u00f3nico y ARN Policistr\u00f3nico,<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h3>Splicing&nbsp;de\nARN<\/h3>\n\n\n\n<p>El splicing&nbsp;de ARN o proceso de corte y empalme  que consiste en la eliminaci\u00f3n de los intrones en el ARN mensajero. Los intrones son secuencias de ADN que no son parte del gen pero que \u201cinterrumpen\u201d dicha secuencia. Los intrones no se traducen y por ello deben ser eliminados del mensajero, algunos intrones encontrados en genes nucleares o mitocondriales pueden realizar el proceso de&nbsp;splicing&nbsp;sin ayuda de enzimas o ATP y se lleva a cabo por reacciones de transesterificaci\u00f3n.  El proceso de&nbsp;splicing&nbsp;es mediado por un complejo proteico denominado espliceosoma o complejo de corte y empalme (ver figura 29). El sistema est\u00e1 integrado por complejos de ARN especializados llamados ribonucleoprote\u00ednas peque\u00f1as nucleares (RNP). Existen cinco tipos de RNP: U1, U2, U4, U5 y U6, que se encuentran en el n\u00facleo y median el proceso de&nbsp;splicing. Este mecanismo fue descubierto en el protozoario ciliado&nbsp;<em>Tetrahymena thermophila<\/em>. La mayor\u00eda de los genes de los vertebrados poseen intrones, a excepci\u00f3n de los genes que codifican para las histonas. Del mismo modo, el n\u00famero de intrones en un gen puede variar desde unos pocos hasta decenas de estos.<sub>8 <\/sub> <\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"638\" height=\"479\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/splincing.jpg\" alt=\"\" class=\"wp-image-437\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/splincing.jpg 638w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/splincing-300x225.jpg 300w\" sizes=\"(max-width: 638px) 100vw, 638px\" \/><figcaption>Figura 29. Splicing<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p>El&nbsp;splicing&nbsp;puede producir m\u00e1s de un tipo de prote\u00edna  se llama splicing&nbsp;alternativo\u2014, ya que los exones se arreglan de manera diferencial, creando variedades de ARN mensajeros.<sub>8 <\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>ARN&nbsp;DE TRANSFERENCIA<\/h3>\n\n\n\n<p>El ARN de transferencia es el&nbsp;encargado de transportar los amino\u00e1cidos&nbsp;en el citoplasma para la s\u00edntesis de prote\u00ednas <sub>9<\/sub> Esta formado por 70-90 nucle\u00f3tidos <sub>8<\/sub>La estructura tiene pliegues y cruces (ver figura 30), En uno de los extremos se ubica un anillo adenina, &nbsp;el grupo hidroxilo de la ribosa &nbsp;hace la uni\u00f3n con el amino\u00e1cido para &nbsp;ser transportado.<sub>8<\/sub><\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" width=\"275\" height=\"272\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-TRANSFERENCIA.png\" alt=\"\" class=\"wp-image-456\" \/><figcaption>Figura 30 , ARN de transferencia<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<p>Los distintos ARN de transferencia se combinan exclusivamente con uno de los veinte amino\u00e1cidos que forman las prote\u00ednas;  El complejo del ARN de transferencia junto con el amino\u00e1cido se denomina aminoacil\u2013ARNt.<\/p>\n\n\n\n<p>En el proceso de traducci\u00f3n  cada ARN de transferencia reconoce un cod\u00f3n espec\u00edfico en el ARN mensajero. Cuando lo reconoce, el amino\u00e1cido correspondiente es liberado y pasa a formar parte del p\u00e9ptido sintetizado, en el emparejamiento de bases entre el ARNt y el ARNm permiten que se inserte el amino\u00e1cido correcto en la cadena de polip\u00e9ptidos presentando&nbsp;fragmentos con estructura de doble h\u00e9lice&nbsp;y otros en forman&nbsp;bucles, (ver figura 31), el ARN cuenta con un \u201canticodon\u201d situado en la regi\u00f3n media de la mol\u00e9cula. Este anticod\u00f3n es capaz de formar enlaces de hidr\u00f3geno con las bases complementarias presentes en el ADN mensajero.<sub>8<\/sub>   <\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-transferncia1-1024x1023.jpg\" alt=\"\" class=\"wp-image-459\" width=\"511\" height=\"510\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-transferncia1.jpg 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-transferncia1-150x150.jpg 150w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-transferncia1-300x300.jpg 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-transferncia1-768x767.jpg 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/ARN-transferncia1-510x510.jpg 510w\" sizes=\"(max-width: 511px) 100vw, 511px\" \/><figcaption>Figura 31. ARN de Transferencia<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h3>MicroARN<\/h3>\n\n\n\n<p>Los micro ARN o ARN mi son de una sola cadena, entre 21 y 23 nucle\u00f3tidos, cuya funci\u00f3n es regular la expresi\u00f3n de los genes.<sub>4<\/sub> Como no se traducen a prote\u00ednas, se pueden llamar ARN no codificante.<sub>8<\/sub> Derivan de precursores m\u00e1s largos denominados ARNmi\u2013pri, derivados del primer transcrito del gen. En el n\u00facleo de la c\u00e9lula, estos precursores son modificados en el complejo de microprocesador y el resultado es un pre\u2013ARNmi. Los pre\u2013ARNmi est\u00e1n formados &nbsp;de 70 nucle\u00f3tidos que contin\u00faan su procesamiento en el citoplasma por una enzima llamada Dicer, que ensambla el complejo de silenciamiento inducido por ARN (RISC) y finalmente se sintetiza el ARNmi ( ver figura 32). Estos ARN son capaces de regular la expresi\u00f3n de los genes, ya que son complementarios a ARN mensajeros espec\u00edficos. <sub>8<\/sub> <\/p>\n\n\n\n<figure class=\"wp-block-image is-resized\"><img decoding=\"async\" loading=\"lazy\" src=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/MICRO-ARN-1024x725.jpg\" alt=\"\" class=\"wp-image-462\" width=\"653\" height=\"462\" srcset=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/MICRO-ARN-1024x725.jpg 1024w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/MICRO-ARN-300x212.jpg 300w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/MICRO-ARN-768x544.jpg 768w, https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-content\/uploads\/sites\/54\/2019\/09\/MICRO-ARN.jpg 1651w\" sizes=\"(max-width: 653px) 100vw, 653px\" \/><figcaption>Figura 32, micro ARN<\/figcaption><\/figure>\n\n\n\n<h3>ARN DE SILENCIAMIENTO<\/h3>\n\n\n\n<p>Es un tipo  de micro ARN son cortos de 20 a 25 nucle\u00f3tidos que obstaculizan la expresi\u00f3n de ciertos genes. A cada cod\u00f3n del ARNm le corresponde el&nbsp;ARNt que posea el anticod\u00f3n complementario, el cual transporta un determinado amino\u00e1cido. Es por eso que cada gen codifica espec\u00edficamente la s\u00edntesis de una&nbsp;prote\u00edna, pues proporciona la informaci\u00f3n necesaria para unir sus&nbsp;amino\u00e1cidos en la secuencia adecuada en el proceso de&nbsp;traducci\u00f3n.<sub>7<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>El ARN\nribos\u00f3mico<\/h3>\n\n\n\n<p>El ARN ribos\u00f3mico es el m\u00e1s abundante  80 % del ARN celular. Sus mol\u00e9culas son largas y monocatenarias, aunque presenta fragmentos con estructura de doble cadena. Tiene&nbsp;funci\u00f3n estructural&nbsp;ya que se encuentra con prote\u00ednas formando los&nbsp;ribosomas.<sub>7<\/sub><\/p>\n\n\n\n<p>Un ribosoma tiene dos partes: una subunidad grande y una subunidad peque\u00f1a, el ARNm se encuentra entre las dos subunidades.&nbsp;Ambas subunidades difieren entre los procariotas y los eucariotas en cuanto al coeficiente de sedimentaci\u00f3n. Los procariotas poseen una subunidad grande 50S y una peque\u00f1a de 30S, mientras que en los eucariotas la subunidad grande es 60S y la peque\u00f1a 40S.<sub>8<\/sub> Los genes que codifican para los ARN ribosomales est\u00e1n en el nucl\u00e9olo. Los ARN ribosomales son transcritos en una regi\u00f3n por la ARN polimerasa I. <\/p>\n\n\n\n<p>Una mol\u00e9cula de ARNt reconoce un cod\u00f3n en el ARNm, se une a \u00e9l mediante un emparejamiento de bases complementario y agrega el amino\u00e1cido correcto a la cadena pept\u00eddica en crecimiento.<sub>6 <\/sub>El ARNr del ribosoma tambi\u00e9n tiene una actividad enzim\u00e1tica (peptidil transferasa) y cataliza la formaci\u00f3n de los enlaces pept\u00eddicos entre dos amino\u00e1cidos alineados.&nbsp;&nbsp;La secuencia de bases de ARN es complementaria a la secuencia de codificaci\u00f3n del ADN del que se ha copiado.&nbsp;<sub>7<\/sub><\/p>\n\n\n\n<h3>Polirribosomas<\/h3>\n\n\n\n<p>Una mol\u00e9cula de ARN mensajero puede dar origen a varias prote\u00ednas a la vez, uni\u00e9ndose a m\u00e1s de un ribosoma. A medida que avanza el proceso de traducci\u00f3n, el extremo del mensajero queda libre y puede ser captado por otro ribosoma, empezando una nueva s\u00edntesis. Por eso es com\u00fan encontrar a los ribosomas agrupados entre 3 y 10, en una sola mol\u00e9cula de ARN mensajero y  se le llaman poliribosomas. <sub>8<\/sub> <\/p>\n\n\n\n<h2>Referencias<\/h2>\n\n\n\n<p>1.-\nUniversidad Nacional de Colombia. (2018). <em>\u00c1cidos Nucleicos<\/em>. StuDocu.com.\nRecuperado desde: https:\/\/www.studocu.com\/es-mx\/document\/universidad-nacional-de-colombia\/colombia-contemporanea\/trabajo-de-tutoria\/acidos-nucleicos\/3966046\/view\n<\/p>\n\n\n\n<p>2.-\nBurriel, V. (2019).&nbsp; <em>Estructura y\nPropiedades de los \u00e1cidos Nucleico<\/em>s. Universidad de Valencia. Recuperado\ndesde: https:\/\/www.uv.es\/tunon\/pdf_doc\/AcidosNucleicos_veronica.pdf<\/p>\n\n\n\n<p>3.- Rice University. (2017). <em>Biology<\/em>.\nOpenStax. Recuperado desde:\nhttps:\/\/cnx.org\/contents\/GFy_h8cu@11.10:yxeAKc4X@9\/Nucleic-Acids<\/p>\n\n\n\n<p>4.-Centro\nde Estudios Cient\u00edficos. (2019). La Historia del ADN. 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Recuperado desde: http:\/\/facultatciencies.uib.cat\/prof\/josefa.donoso\/campus\/modulos\/modulo5\/modulo5_5_3.htm<\/p>\n\n\n\n<p>14.-admin. (2018). <em>Estructuras de i-motif en el n\u00facleo\nde las c\u00e9lulas humanas<\/em>.\nAMYS: Asociaci\u00f3n de Microbiolog\u00eda\ny Salud. Recuperado desde: http:\/\/www.microbiologiaysalud.org\/noticias\/estructuras-cuadruples-de-i-motif-en-el-nucleo-d<\/p>\n\n\n\n<p>15.-&nbsp;Berg, J., Tymoczko, J. y Stryer, L. (2002)&nbsp;<em>Biochemistry.<\/em>&nbsp;W.\nH. Freeman and Company&nbsp;<a href=\"https:\/\/es.wikipedia.org\/wiki\/Especial:FuentesDeLibros\/0716749556\">ISBN\n0-7167-4955-6<\/a>.<\/p>\n\n\n\n<p>16.-&nbsp;Kossel, A.; Steudel, H. Z. (1903). \u00abWeitere Untersuchungen\n\u00fcber das Cytosin\u00bb.&nbsp;<em>Physiol. 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(2000).&nbsp;<a href=\"http:\/\/www.pubmedcentral.nih.gov\/picrender.fcgi?artid=1300792&amp;blobtype=pdf\">\u00abMechanical stability\nof single DNA molecules\u00bb<\/a>.&nbsp;<em>Biophys J<\/em>&nbsp;<strong>78<\/strong>&nbsp;(4):\n1997-2007.&nbsp;<a href=\"https:\/\/es.wikipedia.org\/wiki\/PubMed_Identifier\">PMID<\/a>&nbsp;<a href=\"https:\/\/www.ncbi.nlm.nih.gov\/pubmed\/10733978\">10733978<\/a>.<\/p>\n\n\n\n<p>20,. Basu, H., Feuerstein, B., Zarling, D., Shafer, R., Marton, L.\n(1988). \u00abRecognition of Z-RNA and Z-DNA determinants by polyamines in solution:\nexperimental and theoretical studies\u00bb.&nbsp;J Biomol Struct Dyn&nbsp;6&nbsp;(2):\n299-309.&nbsp;<\/p>\n\n\n\n<p>21h, D., Kim, Y., Rich, A. (2002).&nbsp;<a href=\"http:\/\/www.pubmedcentral.nih.gov\/articlerender.fcgi?tool=pubmed&amp;pubmedid=12486233\">\u00abZ-DNA-binding\nproteins can act as potent effectors of gene expression in vivo\u00bb<\/a>.&nbsp;Proc.\nNatl. Acad. Sci. 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Al examinar las vendas con pus, not\u00f3 un precipitado de una sustancia desconocida la cual llam\u00f3 nucle\u00edna, debido a que lo hab\u00eda extra\u00eddo a partir de los &hellip; <\/p>\n<p class=\"link-more\"><a href=\"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/acidos-nucleicos\/\" class=\"more-link\">Continuar leyendo<span class=\"screen-reader-text\"> &#8220;\u00c1cidos nucleicos&#8221;<\/span><\/a><\/p>\n","protected":false},"author":5,"featured_media":0,"parent":0,"menu_order":0,"comment_status":"closed","ping_status":"closed","template":"","meta":{"_bbp_topic_count":0,"_bbp_reply_count":0,"_bbp_total_topic_count":0,"_bbp_total_reply_count":0,"_bbp_voice_count":0,"_bbp_anonymous_reply_count":0,"_bbp_topic_count_hidden":0,"_bbp_reply_count_hidden":0,"_bbp_forum_subforum_count":0},"_links":{"self":[{"href":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/13"}],"collection":[{"href":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-json\/wp\/v2\/pages"}],"about":[{"href":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-json\/wp\/v2\/types\/page"}],"author":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-json\/wp\/v2\/users\/5"}],"replies":[{"embeddable":true,"href":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-json\/wp\/v2\/comments?post=13"}],"version-history":[{"count":264,"href":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/13\/revisions"}],"predecessor-version":[{"id":581,"href":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-json\/wp\/v2\/pages\/13\/revisions\/581"}],"wp:attachment":[{"href":"https:\/\/blogceta.zaragoza.unam.mx\/biomoleculas\/wp-json\/wp\/v2\/media?parent=13"}],"curies":[{"name":"wp","href":"https:\/\/api.w.org\/{rel}","templated":true}]}}